Dimensions

PlumX
Cómo citar
Bello Castañeda, N. ., Coy Barrera, C. A., & Perez, M. M. . (2023). Revisión sistemática sobre tipos de sustratos utilizados en la propagación de orquídeas bajo invernadero . Revista Mutis, 13(1), 1–18. https://doi.org/10.21789/22561498.1887
Términos de licencia
Creative Commons License

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.

Creative Commons License

Esta obra está bajo una licencia internacional Creative Commons Atribución-NoComercial-CompartirIgual 4.0.

Resumen

Las orquídeas son una familia de plantas que se distinguen por la complejidad, la belleza de sus flores, las interacciones ecológicas con hongos y polinizadores, por su adaptabilidad en diferentes ambientes y por su amplia diversidad. Existen más de 25 000 especies se han reportado a escala mundial, y Colombia es uno de los países que cuenta con el mayor número de especies de orquídeas: se considera que hay 4 400 especies agrupadas en 274 géneros. El aumento en la demanda comercial legal e ilegal de orquídeas como productos ornamentales ha dado como resultado un mayor interés en el desarrollo de métodos de propagación masiva no solo para su comercialización, sino para su conservación. Por ello, resulta interesante identificar cuáles son los tipos de sustratos utilizados en invernadero para la producción de orquídeas provenientes de cultivo in vitro, a través del análisis de estudios en los cuales se caracterizan los materiales utilizados de acuerdo con el porcentaje de supervivencia de las plantas en el proceso de aclimatación y endurecimiento, etapa en la cual se realiza el trasplante de laboratorio a condiciones de invernadero, así como las implicaciones que presentan a nivel de metabolismo secundario durante diferentes etapas de desarrollo.

Palabras clave:

Citas

Ajú Upún, M. M. (2009). Las orquídeas bases generales para su conocimiento y enseñanza [Tesis doctoral] Universidad EAFIT. http://www.repositorio.usac.edu.gt/1621/1/07_2092.pdf

Almeida, V., Pacheco de Freitas Fraga, H., Bachiega Navarro, B., Guerra, M.P. & Pescador, R. (2017). Dynamics in global DNA methylation and endogenous polyamine levels during protocorm-like bodies induction of Cattleya tigrina A. Richard. Acta Scientiarum. Biol. Sci. 39(4), 497–505 https://doi.org/10.4025/actas cibio lsci. v39i4 .36656

Avila-Diaz, I., Oyama, K., Gomez-Alonso, C. & Salgado-Garciglia, R. (2009). In vitro propagation of the endangered orchid Laelia speciosa. Plant Cell Tissue and Organ Culture, 99, 335–343. https://doi.org/10.1007/s11240-009-9609-8

Amaral, T. L. do Jasmim, J. M., Araújo, J. S. de P., Thiébaut, J. T. L., Coelho, F. C., & Freitas, C. B. de. (2010). Adubação de orquídeas em substratos com fibra de coco. Ciência e Agrotecnologia, 34(1), 11–19. https://doi.org/10.1590/s1413-70542010000100001

Amador-Alferez, K.A., Díaz-Gonzalez, J., Loza-Cornejo, S., Bivian-Castro, E.Y. (2013). Efecto de diferentes reguladores de crecimiento vegetal sobre la germinacion de semillas y desarrollo de plántulas de dos especies de Ferocactus (Cactaceae). Polibotanica (35), 109 –131.

Barros F., Vinhos F., Rodrigues V., Barberena F., Fraga C., Pessoa E., Forster W., Menini Neto, L, Furtado S, Nardy C., Azevedo C. & Guimaraes L. (2016) Orchidaceae. Lista de Especies da Flora do Brasil. Jardim Botanico do Rio de Janeiro. http://floradobrasil.jbrj.gov.br/jabot/floradobrasil/FB179.

Bhattacharyya, P., Kumar, V., Staden, J. (2017). Assessment of genetic stability amongst micropropagated Ansellia africana, a vulnerable medicinal orchid species of Africa using SCoT markers. S. Afr. J. Bot. 108, 294–302. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2016.11.007

Bayraktar, M., Hayta, S., Parlak, S. & Gurel, A. (2015). Micropropagation of centennial tertiary relict trees of Liquidambar orientalis Miller through meristematic nodules produced by cultures of primordial shoots. Trees 29 (4), 999–1009. https://doi.org/10.1007/s00468-015-1179-2

Betancur, J., Sarmiento, H., Toro, L. & Valencia, J. (2015). Plan para el estudio y la conservación de las orquídeas en Colombia. www.minambiente.gov.co

Bertoncelli, D.J., Alves, G.A., Hoshino, R.T., Freiria, G.H., Furlan, F.F., Stegani, V. & Faria, R.D. (2017). In vitro development of endangered Laelia marginata Lindl. in growth media containing different nitrate/ammonium ratios. Ornamental Horticulture 23, 392–399. https://doi.org/10.14295/oh.v23i4.1019

Bezerra, G. A., Gabriel, A. V. M. D., Mariano, E. D., & Cardoso, J. C. (2019). In vitro culture and greenhouse acclimatization of Oncidium varicosum (Orchidaceae) with microorganisms isolated from its roots. Ornamental Horticulture, 25(4), 407–416. https://doi.org/10.1590/2447-536X.v25i4.2046

Calderón-Sáenz, E. (2006). Libro rojo de plantas de Colombia. Vol. 6, Orquídeas. 1 pt. In instname:Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. http://repository.humboldt.org.co/handle/20.500.11761/31410#.XNhjotxEgEU.mendeley

Castellanos-Castro, C. y Torres-Morales, G. (2018). Orquídeas de Cundinamarca: conservación y aprovechamiento sostenible.

Cetzal-Ix, W., Carnevali, G., Jimenez-Machorro, R. & Perez-García, E. (2020). Laelia £ meavei: A new natural hybrid between L. dawsonii fo. dawsonii and L. rubescens fo. peduncularis (Orchidaceae: Laeliinae) from Oaxaca, Mexico. Phytotaxa. 446, 081–094. https://doi.org/10.11646/phytotaxa.446.2.1

Coello, C. Y. (2010). Plant growth regulators optimization for in vitro cultivation of the orchid Guarianthe skinneri (Bateman) Dressier & W.E. Higgins. Gayana Botánica, 67(1), 19-26. https://doi.org/10.4067/S0717-66432010000100003

Colombo, R. C., Hoshino, R. T., Ferrari, E. A. P., Alves, G. A. C. & de Faria, R. T. (2017). Cattleya forbesii x Cattleya bowringiana: A new hybrid of Cattleya orchid. Crop Breeding and Applied Biotechnology, 17(2), 184–186. https://doi.org/10.1590/1984-70332017v17n2c28

Coopman, J. & Kane, M. E. (2018). Greenhouse acclimatization methods for field establishment of in vitro –derived ghost orchid (Dendrophylax lindenii) plants. Native Plants Journal, 19(2), 100–108. https://doi.org/10.3368/npj.19.2.100

Cribb, P., Kell, S., Dixon, K., & Barrett, R. (2003). Orchid conservation: a global perspective. Orchid Conservation, May 2014, 1–24.
de Stegani, Vanessa Faria, R. T., Bertoncelli, D., Cito Alves, G. A. & De Assis, A. M. (2018). Substrates for the cultivation of epiphytic orchids. Semina: Ciencias Agrarias, 39(6), 2851–2866. https://doi.org/10.5433/1679-0359.2018v39n6p2851

Dewir, Y. H., El-Mahrouk, M. E., Murthy, H. N. & Paek, K. Y. (2015). Micropropagation of Cattleya: Improved in vitro rooting and acclimatization. Horticulture Environment and Biotechnology, 56(1), 89–93. https://doi.org/10.1007/s13580-015-0108-z

Dressler, R. L. (1995). Phylogeny and Classification of the Orchid Family Robert L. Dressler. In The Quarterly Review of Biology Vol. 70. https://doi.org/10.1086/418905

Franco, M., Guevara, G., Mesa, N. & Urueña, G. (2007). Hardening of the national flower of Colombia, the threatened Cattleya trianae (Orchidaceae), from in vitro culture with previous invigoration phase. Revista de Biología Tropical, 55(2), 681–691. https://doi.org/10.15517/rbt.v55i2.6045

Gutiérrez, D., Navarrete, G., & Espín, C. G. (2014). Orquídeas de la Amazonía Ecuatoriana: maravillas escondidas en las montañas Andino Amazónicas. Huella Se Sumaco. Revista Socio Ambiental de La Amazonía Ecuatoriana, 11, 27–30.

Hew, C. S. & Yong, J. W. H. (2004). A Brief Introduction to Orchid Morphology and Nomenclature. In The Physiology of Tropical Orchids in Relation to the Industry. https://doi.org/10.1142/9789812567215_0002

Hinsley, A., De Boer, H. J., Fay, M. F., Gale, S. W., Gardiner, L. M., Gunasekara, R. S., Kumar, P., Masters, S., Metusala, D., Roberts, D. L., Veldman, S., Wong, S. & Phelps, J. (2018). A review of the trade in orchids and its implications for conservation. Botanical Journal of the Linnean Society, 186(4), 435–455. https://doi.org/10.1093/botlinnean/box083

Hoshino, R. T., Alves, G. A. C., Melo, T. R., Barzan, R. R., Fregonezi, G. A. F., & Faria, R. T. (2016). Adubação mineral e orgânica no desenvolvimento de orquídea Cattlianthe ‘Chocolate drop’. Horticultura Brasileira, 34(4), 475–482. https://doi.org/10.1590/S0102-053620160405

Hossain, M. M. (2008). Asymbiotic seed germination and in vitro seedling development of Epidendrum ibaguense Kunth. (Orchidaceae). African Journal of Biotechnology, 7(20), 3614–3619. https://www.ajol.info/index.php/ajb/article/view/59389

Koene, F. M., Amano, É. & Ribas, L. L. F. (2019). Asymbiotic seed germination and in vitro seedling development of Acianthera prolifera (Orchidaceae). South African Journal of Botany, 121, 83–91. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2018.07.019

Kolanowska, M. (2021). The future of a montane orchid species and the impact of climate change on the distribution of its pollinators and magnet species. Global Ecology and Conservation, 32, e01939. https://doi-org.ezproxy.umng.edu.co/10.1016/j.gecco.2021.e01939

Krupnick, G. A., McCormick, M. K., Mirenda, T. & Whigham, D. F. (2013). The status and future of orchid conservation in North America. Annals of the Missouri Botanical Garden, 99(2), 180–198. https://doi.org/10.3417/2011108

Kunakhonnuruk, B., Inthima, P. & Kongbangkerd, A. (2018). In vitro propagation of Epipactis flava Seidenf, an endangered rheophytic orchid: a first study on factors affecting asymbiotic seed germination, seedling development and greenhouse acclimatization. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 135(3), 419–432. https://doi.org/10.1007/s11240-018-1475-9

Lallana, V. H., Michel, A. & García, L. F. (2019). Floración, fructificación y producción de semillas en plantas de Polystachya concreta (Jacq.) Garay y H.R. Sweet (Orquidaceae). Investigación Agraria, 21(1), 65–72. https://doi.org/10.18004/investig.agrar.2019.junio.65-72

Lee, Y. & Yeung, E. C. (2018). Orchid Propagation: From Laboratories to Greenhouses— Methods and Protocols. https://doi.org/10.1007/978-1-4939-7771-0

Lesar, H., Hlebec, B., Čeranič, N., Kastelec, D. & Luthar, Z. (2012). Acclimatization of terrestrial orchid Bletilla striata Rchb.f. (Orchidaceae) propagated under in vitro conditions. Acta Agriculturae Slovenica, 99(1), 69–75. https://doi.org/10.2478/v10014-012-0001-8

López, M. (2018). Diversidad de orquídeas en áreas silvestres y de uso antrópico de la región del tequendama, cordillera oriental de colombia.

Macedo, M. C., Rosa, Y. B. C. J., de Scalon, S. P. Q., Rosa Junior, E. J., do Vieira, M. C., & Tatara, M. B. (2011). Substratos e intensidades de luz no cultivo de orquídea denfal. Horticultura Brasileira, 29(2), 168–173. https://doi.org/10.1590/S0102-05362011000200006

Mercado, S. & Delgado, E. (2020). Effect of the medium composition on the asymbiotic germination and in vitro development of the Laeliocattleya hybrid. S. Afr. J. Bot., 135, 80-86. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2020.08.011

Mirani, A. A., Abul-soad, A. A. & Markhand, G. S. (2017). Effect of different substrates on survival and growth of transplanted orchids (Dendrobium nobile cv.) into net house. International Journal of Horticulture and Floriculture, 5(4), 310–317.

Moraes, L., Cavalcante, L. & Faria, R. (2002). Substratos para aclimatização de plântulas de Dendrobium nobile Lindl. (Orchidaceae) propagadas in vitro. Acta Scientiarum. Agronomy, 24(5), 1397–1400. https://doi.org/10.4025/actasciagron.v24i0.2429

Murillo-Talavera, M.M., Pedraza-Santos, M.E., Gutiérrez-Rangel, N., Rodríguez-Mendoza, M.de las N., Lobit, P. & Martinez-Palacios, A. (2016). Led light quality and in vitro development of Oncidium tigrinum and Laelia autumnalis (orchidaceae). Agrociencia 50, 1065–1080.

Paul, P., Joshi, M., Gurjar, D., Shailajan, S. & Kumaria, S. (2017). In vitro organogenesis and estimation of -sitosterol in Dendrobium fimbriatum Hook.: an orchid of biopharmaceutical importance. South African J. Bot. 113, 248–252. https://doi.org/10.1016/j.sajb.2017.08.019

Pansarin, E. & Pansarin, L. M. (2010). The Family Orchidaceae in the Serra do Japi, São Paulo state, Brazil. Ed. Springer Verlag/Wien. https://doi.org/10.1007/978-3-211-99755-0

Pires, M. V., de Almeida, A. A. F., Abreu, P; da Costa Silva, D. (2012). Does shading explain variation in morphophysiological traits of tropical epiphytic orchids grown in artificial conditions? Acta Physiologiae Plantarum, 34(6), 2155–2164. https://doi.org/10.1007/s11738-012-1016-9

Raya-Montaño, Y. A., Carrillo-Castañeda, G., Pedraza-Santos, M. E., Corona-Torres, T., Carrillo-Salazar, J. A., & Alcantar-González, G. (2011). Propagación in vitro de Laelia halbingeriana. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 3, 539–553.

Štípková, Z., Tsiftsis, S., & Kindlmann, P. (2021). How did the agricultural policy during the communist period affect the decline in orchid biodiversity in central and eastern europe? Global Ecology and Conservation, 26, e01498. https://doi.org/10.1016/j.gecco.2021.e01498

Stancik, J. F., Goldenberg, R., & Barros, F. (2009). O gênero Epidendrum L. (Orchidaceae) no Estado do Paraná, Brasil. Acta Botanica Brasilica, 23(3), 864–880. https://doi.org/10.1590/s0102-33062009000300028

Teixeira da Silva, J. A., Hossain, M. M., Sharma, M., Dobránszki, J., Cardoso, J. C. & ZENG, S. (2017). Acclimatization of in Vitro -derived Dendrobium. Horticultural Plant Journal, 3(3), 110–124. https://doi.org/10.1016/j.hpj.2017.07.009

Tejeda-Sartorius, O., Trejo-Téllez, L. I., Arguello-Quechuleño, M. & Téllez-Velasco, M. L. A. A. (2013). Organic and mineral fertilizer sources in Laelia anceps Lindl. subsp. anceps (Orchidaceae) in vegetative phase. Revista Mexicana de Ciencias Agrícolas, 4(SPE5), 951–965. https://doi.org/10.29312/remexca.v0i5.1301

Yamamoto, L. Y., Sorace, M., Faria, R. T., Takahashi, L. S. & Schnitzer, J. A. (2009). Substratos alternativos ao xaxim no cultivo do híbrido primário Miltonia regnellii Rchb. f. X Oncidium concolor Hook. (Orchidaceae). Semina: Ciencias Agrarias, 30(SUPPL.1), 1035–1042. https://doi.org/10.5433/1679-0359.2009v30n4sup1p1035

Zhang, S., Yang, Y., Li, J., Qin, J., Zhang, W., Huang, W. & Hu, H. (2018). Physiological diversity of orchids. Plant Diversity, 40(4), 196–208. https://doi.org/10.1016/j.pld.2018.06.003

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Citado por

Sistema OJS - Metabiblioteca |